AF488 酪胺
| 货号 |
11070 |
存储条件 |
在零下15度以下保存, 避免光照 |
| 规格 |
200 slides |
价格 |
2604 |
| Ex (nm) |
499 |
Em (nm) |
520 |
| 分子量 |
856.02 |
溶剂 |
DMSO |
| 产品详细介绍 |
简要概述
AF488酪胺是美国AAT Bioquest生产的荧光探针，对于许多免疫组织化学（IHC）应用，传统的酶促扩增程序足以实现足够的抗原检测。但是，有几个因素限制了这些程序的敏感性和实用性。事实证明，酪胺信号放大（TSA）是一种特别通用且功能强大的酶扩增技术，具有更高的检测灵敏度。TSA基于HRP在低浓度过氧化氢存在下将含有标记酪胺的底物转化为氧化的高反应性自由基的能力，该自由基可与HRP处或附近的酪氨酸残基共价结合。为了实现最大IHC检测，酪胺用荧光团预标记。每个过氧化物酶标记物的多个酪胺底物转换所赋予的信号放大转化了对低丰度靶标的超灵敏检测以及使用较少量的抗体和杂交探针。在免疫组织化学应用中，源自TSA方法的灵敏度增强允许增加一级抗体稀释以减少非特异性背景信号，并且可以克服由次优固定程序或低水平靶表达引起的弱免疫标记。AF488酪胺含有明亮的AlexaFluor®488，可以使用标准FITC滤波片组轻松检测（AlexaFluor®是ThermoFisher的商标）。金畔生物是AAT Bioquest的中国代理商，为您提供最优质的AF488酪胺。
适用仪器
| 荧光显微镜 |
|
| 激发： |
FITC滤波片组 |
| 发射： |
FITC滤波片组 |
| 推荐孔板： |
黑色透明 |
| 滤波片： |
FITC滤波片组 |
产品说明书
染色样品示例
概述
1.固定/透化/阻断细胞或组织
2.在封闭缓冲液中加入一抗
3.加入HRP偶联的二抗
4.准备酪胺工作溶液，室温下在细胞或组织中5-10分钟
操作步骤
在没有额外说明的情况下，所有未使用的储备溶液应分成一次性等分试样，并在制备后储存在-20°C。 避免反复冻融循环。
1.Tyramide原液（200X）：
将100μLDMSO加入小瓶中并充分混合。
注意：未使用的Tyramide原液可以在2-8℃下储存。
2.Tyramide工作溶液（1X）：
将100μLTyramide原液加入20 mL含有0.003％H2O2的缓冲液中。
注意：Tris Buffer，pH = 7.4可用于获得最佳性能。
注意：Tyramide工作溶液应立即使用。
注意：20 mL溶液适用于200次测试。
3.细胞固定和透化
3.1在室温下用PBS中的3.7％甲醛或多聚甲醛固定细胞或组织20分钟。
3.2用PBS冲洗细胞或组织两次。
3.3在室温下用0.1％Triton X-100溶液使细胞透化1-5分钟。
3.4用PBS冲洗细胞或组织两次。
4.过氧化物酶标记
4.1任选：通过在过氧化物酶猝灭溶液（例如3％过氧化氢）中孵育细胞或组织样品10分钟来淬灭内源性过氧化物酶活性。 在室温下用PBS冲洗两次。
4.2可选：如果使用HRP偶联的链霉抗生物素蛋白，建议通过生物素阻断缓冲液阻断内源性生物素。
4.3用优选的封闭溶液（例如含有1％BSA的PBS）在4℃下封闭30分钟。
4.4取出封闭溶液，加入在推荐抗体稀释液中稀释的一抗在室温下60分钟或在4°C下过夜。
4.5用PBS洗涤三次，每次5分钟。
4.6向每个样品中加入100μL二抗-HRP工作溶液，在室温下孵育60分钟。
注意孵育时间和浓度可根据信号强度而变化。
4.7用PBS洗涤三次，每次5分钟。
5.Tyramide标记
5.1为每个样品准备并应用100μLTyramide工作溶液，并在室温下孵育5-10分钟。
注意：如果您观察到非特异性信号，可以缩短Tyramide的孵育时间。 您应该在不同的孵育时间点使用阳性和阴性对照样品优化孵育期。 或者您可以在工作溶液中使用较低浓度的Tyramide。
5.2用PBS冲洗三次。
6.荧光成像
6.1根据需要对细胞或组织样本进行计数。 AAT提供了一系列细胞核复染试剂，如表1所列。按照试剂提供的说明进行操作。
6.2使用具有抗褪色特性的安装介质安装盖玻片。
6.3使用适当的过滤器组可视化来自Tyramide标签的信号。
表1.推荐用于核复染的产品
| 货号 |
产品名称 |
Ex/Em(nm) |
| 17548 |
Nuclear Blue DCS1 |
350/461 |
| 17550 |
Nuclear Green DCS1 |
503/526 |
| 17551 |
Nuclear Orange DCS1 |
528/576 |
| 17552 |
Nuclear Red DCS1 |
642/660 |
参考文献
A amperometric immunosensor for sensitive detection of circulating tumor cells using a tyramide signal amplification-based signal enhancement system
Authors: X. Zhou
Journal: Biosens Bioelectron (2019): 88-94
An ultrasensitive electrochemical immunosensor for procalcitonin detection based on the gold nanoparticles-enhanced tyramide signal amplification strategy
Authors: P. Liu
Journal: Biosens Bioelectron (2019): 543-550
Gold nanoparticle labeling with tyramide signal amplification for highly sensitive detection of alpha fetoprotein in human serum by ICP-MS
Authors: X. Li
Journal: Talanta (2018): 40-46
High Resolution Fluorescent In Situ Hybridization in Drosophila Embryos and Tissues Using Tyramide Signal Amplification
Authors: A. Jandura
Journal: J Vis Exp (2017): se name=”11070.enl” path=”C:WebsiteReferencesEN Files11070.enl”>11070.enlEndNote3317Jandura, A.Hu, J.Wilk, R.Krause, H. M.The Terrence Donnelly Centre for Cellular and Biomolecular Research, University of Toronto; Department of Molecular Genetics, Uni
Selective Proteomic Proximity Labeling Assay Using Tyramide (SPPLAT): A Quantitative Method for the Proteomic Analysis of Localized Membrane-Bound Protein Clusters
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Journal: Curr Protoc Protein Sci (2017): 19 27 1-19 27 18
Droplet-Free Digital Enzyme-Linked Immunosorbent Assay Based on a Tyramide Signal Amplification System
Authors: K. Akama
Journal: Anal Chem (2016): 7123-9
Selective Proteomic Proximity Labeling Assay Using Tyramide (SPPLAT): A Quantitative Method for the Proteomic Analysis of Localized Membrane-Bound Protein Clusters
Authors: J. S. Rees
Journal: Curr Protoc Protein Sci (2015): 19 27 1-18
Quantum dot-based FRET for sensitive determination of hydrogen peroxide and glucose using tyramide reaction
Authors: X. Huang
Journal: Talanta (2013): 79-84
Gold nanoparticle-enzyme conjugates based FRET for highly sensitive determination of hydrogen peroxide, glucose and uric acid using tyramide reaction
Authors: X. Huang
Journal: Analyst (2012): 3659-66
Filtration-based tyramide amplification technique–a new simple approach for rapid detection of aflatoxin B1
Authors: D. Saha
Journal: Anal Bioanal Chem (2007): 1121-30
